Curativo de espuma de poli (álcool vinílico) e alginato de sódio carregado com própolis e vitamina A: atividade biológica e biocompatibilidade
DOI:
https://doi.org/10.5902/2179460X89892Palavras-chave:
Materiais biomédicos, Produtos naturais, Cicatrização de tecidos, Regeneração de tecidosResumo
A própolis é rica em polifenóis com propriedades cicatrizantes, antioxidantes, bactericidas e anti-inflamatórias. A vitamina A desempenha um papel crucial na diferenciação e maturação epidérmica, bem como na promoção da angiogênese e do recrutamento celular. A utilização de curativos poliméricos contendo substâncias bioativas oferece uma estratégia vantajosa para o tratamento de feridas. Neste estudo, desenvolvemos três tipos de curativos de poli(álcool vinílico) e alginato de sódio (nas proporções 100:0, 75:25 e 50:50, v) contendo própolis e vitamina A. Também avaliamos dois métodos diferentes. da extração de própolis e suas propriedades biológicas em combinação com vitamina A. Os curativos foram confeccionados por liofilização e reticulados com glutaraldeído. Testes de biocompatibilidade foram realizados tanto nos curativos quanto em seus componentes. Dentre os métodos de extração, a extração assistida por ultrassom (EAU) da própolis foi mais eficiente que a maceração, produzindo maiores quantidades de polifenóis. O extrato dos Emirados Árabes Unidos foi particularmente rico em rutina (26,4 mg/g) e quercetina (17,21 mg/g), exibindo forte atividade antioxidante. Ambos os extratos de própolis foram testados contra bactérias, mas apenas o extrato dos Emirados Árabes Unidos foi eficaz contra todas as cepas bacterianas testadas. A adição de vitamina A não interferiu nas atividades biológicas da própolis. Os curativos desenvolvidos neste estudo com potencial para o tratamento de feridas, prevenindo infecções bacterianas, e possivelmente promovam rápida cicatrização.
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Referências
Abdelmalek, M., & Spencer, J. (2006). Retinoids and Wound Healing. Dermatologic Surgery, 32(10), 1219–1230. https://doi.org/10.1111/j.1524-4725.2006.32280.x DOI: https://doi.org/10.1111/j.1524-4725.2006.32280.x
Amin, M. U., Khurram, M., Khattak, B., & Khan, J. (2015). Antibiotic additive and synergistic action of rutin, morin and quercetin against methicillin-resistant Staphylococcus aureus. BMC Complementary and Alternative Medicine, 15(1), 59. https://doi.org/10.1186/s12906-015-0580-0 DOI: https://doi.org/10.1186/s12906-015-0580-0
Araruna, M. K. A., Brito, S. A., Morais-Braga, M. F. B., Santos, K. K. A., Souza, T. M., Leite, T. R., & Coutinho, H. D. M. (2012). Evaluation of antibiotic & antibiotic modifying activity of pilocarpine & rutin. The Indian Journal of Medical Research, 135, 252–254. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22446871
Arruda, S. F., Siqueira, E. M. de A., & de Valência, F. F. (2009). Vitamin A deficiency increases hepcidin expression and oxidative stress in rats. Nutrition, 25(4), 472–478. https://doi.org/10.1016/j.nut.2008.11.030 DOI: https://doi.org/10.1016/j.nut.2008.11.030
ASTM. F756 - 17 Standard Practice for Assessment of Hemolytic Properties of Materials. (2017). https://doi.org/10.1520/F0756-17 DOI: https://doi.org/10.1520/F0756-17
Barku, Y. A. V. (2019). Wound healing: contributions from plant secondary metabolite antioxidants. In: Wound Healing - Current Perspectives. IntechOpen. https://doi.org/10.5772/intechopen.81208. DOI: https://doi.org/10.5772/intechopen.81208
Castro, G. A., Oliveira, C. A., Mahecha, G. A. B., & Ferreira, L. A. M. (2011). Comedolytic effect and reduced skin irritation of a new formulation of all-trans retinoic acid-loaded solid lipid nanoparticles for topical treatment of acne. Archives of Dermatological Research, 303(7), 513–520. https://doi.org/10.1007/s00403-011-1130-3 DOI: https://doi.org/10.1007/s00403-011-1130-3
César, P. H. S., Natarelli, C. V. L., Oliveira, J. E., Andrade, P. A., Dos Santos, T. L., Marcussi, S. (2021). Development and characterization of a poly (vinyl alcohol) and sodium alginate blend foam for wound dressing loaded with propolis and all-trans retinoic acid. Journal of applied polymer science, 138(21), e50480. https://doi.org/10.1002/app.50480 DOI: https://doi.org/10.1002/app.50480
Cintra, A. C. O., De Toni, L. G. B., Sartim, M. A., Franco, J .J., Caetano, R. C., Murakami, M. T., & Sampaio, S. V. (2012). Batroxase, a new metalloproteinase from B. atrox snake venom with strong fibrinolytic activity. Toxicon : Official Journal of the International Society on Toxinology, 60(1), 70–82. https://doi.org/10.1016/j.toxicon.2012.03.018 DOI: https://doi.org/10.1016/j.toxicon.2012.03.018
Combs, G. F., & McClung, J.P. Chapter 6 – Vitamin A. In The Vitamins (pp. 109–159). https://doi.org/10.1016/B978-0-12-802965-7.00006-X DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-802965-7.00006-X
De Lima, G. G., de Souza, R. O., Bozzi, A. D., Poplawska, M. A., Devine, D. M., & Nugent, M. J. D. (2017). Extraction Method Plays Critical Role in Antibacterial Activity of Propolis-Loaded Hydrogels. Journal of Pharmaceutical Sciences, 105(3), 1248–1257. https://doi.org/10.1016/j.xphs.2015.12.027 DOI: https://doi.org/10.1016/j.xphs.2015.12.027
Edwards, R., & Harding, K. G. (2004). Bacteria and wound healing. Current Opinion in Infectious Diseases, 17(2), 91–96. https://doi.org/10.15021046 DOI: https://doi.org/10.1097/00001432-200404000-00004
Enoch, S., & Leaper, D. J. (2008). Basic science of wound healing. Surgery (Oxford), 26(2), 31–37. https://doi.org/10.1016/j.mpsur.2007.11.005 DOI: https://doi.org/10.1016/j.mpsur.2007.11.005
Ganeshpurkar, A., & Saluja, A. K. (2017). The Pharmacological Potential of Rutin. Saudi Pharmaceutical Journal, 25(2), 149–164. https://doi.org/10.1016/j.jsps.2016.04.025 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jsps.2016.04.025
Gopinath, D., Ahmed, M. R., Gomathi, K., Chitra, K., Sehgal, P., & Jayakumar, R. (2004). Dermal wound healing processes with curcumin incorporated collagen films. Biomaterials, 25(10), 1911–1917. https://doi.org/10.1016/S0142-9612(03)00625-2 DOI: https://doi.org/10.1016/S0142-9612(03)00625-2
Guo, S., & DiPietro, L. A. (2010). Factors Affecting Wound Healing. Journal of Dental Research, 89(3), 219–229. https://doi.org/10.1177/0022034509359125 DOI: https://doi.org/10.1177/0022034509359125
Hsu, S. (2003). Green Tea Polyphenols Induce Differentiation and Proliferation in Epidermal Keratinocytes. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics, 306(1), 29–34. https://doi.org/10.1124/jpet.103.049734 DOI: https://doi.org/10.1124/jpet.103.049734
Kapoor, M., Howard, R., Hall, I., & Appleton, I. (2004). Effects of Epicatechin Gallate on Wound Healing and Scar Formation in a Full Thickness Incisional Wound Healing Model in Rats. The American Journal of Pathology, 165(1), 299–307. https://doi.org/10.1016/S0002-9440(10)63297-X DOI: https://doi.org/10.1016/S0002-9440(10)63297-X
Khanna, S. (2001). Upregulation of oxidant-induced VEGF expression in cultured keratinocytes by a grape seed proanthocyanidin extract. Free Radical Biology and Medicine, 31(1), 38–42. https://doi.org/10.1016/S0891-5849(01)00544-5 DOI: https://doi.org/10.1016/S0891-5849(01)00544-5
Lateef, H., Abatan, O. I., Aslam, M. N., Stevens, M. J., & Varani, J. (2005). Topical Pretreatment of Diabetic Rats With All-trans Retinoic Acid Improves Healing of Subsequently Induced Abrasion Wounds. Diabetes, 54(3), 855–861. https://doi.org/10.2337/diabetes.54.3.855 DOI: https://doi.org/10.2337/diabetes.54.3.855
Li, C., Zhang, W. J., Choi, J., & Frei, B. (2016). Quercetin affects glutathione levels and redox ratio in human aortic endothelial cells not through oxidation but formation and cellular export of quercetin-glutathione conjugates and upregulation of glutamate-cysteine ligase. Redox Biology, 9, 220–228. https://doi.org/10.1016/j.redox.2016.08.012 DOI: https://doi.org/10.1016/j.redox.2016.08.012
Loke, W. K., Lau, S. K., Yong, L. L., Khor, E., & Sum, C.K. (2000). Wound dressing with sustained anti-microbial capability. Journal of Biomedical Materials Research, 53(1), 8–17. https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-4636(2000)53:1<8::AID-JBM2>3.0.CO;2-3 DOI: https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-4636(2000)53:1<8::AID-JBM2>3.0.CO;2-3
Martinotti, S., & Ranzato, E. (2015). Propolis: a new frontier for wound healing? Burns & Trauma, 3(1), 9. https://doi.org/10.1186/s41038-015-0010-z DOI: https://doi.org/10.1186/s41038-015-0010-z
Mirza, N., Fishman, M., Fricke, I., Dunn, M., Neuger, A. M., Frost, T. J., & et al. (2006). All-trans-Retinoic Acid Improves Differentiation of Myeloid Cells and Immune Response in Cancer Patients. Cancer Research, 66(18), 9299–9307. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-06-1690 DOI: https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-06-1690
Muliyil, S., & Narasimha, M. (2014). Mitochondrial ROS Regulates Cytoskeletal and Mitochondrial Remodeling to Tune Cell and Tissue Dynamics in a Model for Wound Healing. Developmental Cell, 28(3), 239–252. https://doi.org/10.1016/j.devcel.2013.12.019 DOI: https://doi.org/10.1016/j.devcel.2013.12.019
O’Leary, C., O’Brien, F.J., & Cryan, S.A. (2017). Retinoic Acid-Loaded Collagen-Hyaluronate Scaffolds: A Bioactive Material for Respiratory Tissue Regeneration. ACS Biomaterials Science & Engineering, 3(7), 1381–1393. https://doi.org/10.1021/acsbiomaterials.6b00561 DOI: https://doi.org/10.1021/acsbiomaterials.6b00561
Oryan, A., Alemzadeh, E., & Moshiri, A. (2018). Potential role of propolis in wound healing: Biological properties and therapeutic activities. Biomedicine & Pharmacotherapy, 98, 469–483. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2017.12.069 DOI: https://doi.org/10.1016/j.biopha.2017.12.069
Pastar, I., Stojadinovic, O., Yin, N.C., Ramirez, H., Nusbaum, A. G., Sawaya, A., & et al. (2014). Epithelialization in Wound Healing: A Comprehensive Review. Advances in Wound Care, 3(7), 445–464. https://doi.org/1089/wound.2013.0473 DOI: https://doi.org/10.1089/wound.2013.0473
Penumathsa, S. V., Thirunavukkarasu, M., Koneru, S., Juhasz, B., Zhan, L., Pant, R., & et al. (2007). Statin and resveratrol in combination induce cardioprotection against myocardial infarction in hypercholesterolemic rats. Journal of Molecular and Cellular Cardiology, 42(3), 508–516. https://doi.org/10.1016/j.yjmcc.2006.10.018 DOI: https://doi.org/10.1016/j.yjmcc.2006.10.018
Rittié, L., Fisher, G. J., & Voorhees, J. J. (2006). Retinoid Therapy for Photoaging. In: Skin Aging. Berlin/Heidelberg: Springer-Verlag, 143–156. https://doi.org/10.1007/3-540-32953-6_13 DOI: https://doi.org/10.1007/3-540-32953-6_13
Sagnella, S., & Mai-Ngam, K. (2005). Chitosan based surfactant polymers designed to improve blood compatibility on biomaterials. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 42(2), 147–155. https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2004.07.001 DOI: https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2004.07.001
Salgueiro, A. C. F., Leal, C. Q., Bianchini, M. C., Prado, I. O., Mendez, A. S. L., Puntel, R. L., & et al. (2013). The influence of Bauhinia forficata Link subsp. pruinosa tea on lipid peroxidation and non-protein SH groups in human erythrocytes exposed to high glucose concentrations. Journal of Ethnopharmacology, 148(1), 81–87. https://doi.org/10.1016/j.jep.2013.03.070 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jep.2013.03.070
Scazzocchio, F., D’Auria, F. D., Alessandrini, D., & Pantanella, F. (2006). Multifactorial aspects of antimicrobial activity of propolis. Microbiological Research, 161(4), 327–333. https://doi.org/10.1016/j.micres.2005.12.003 DOI: https://doi.org/10.1016/j.micres.2005.12.003
Sgambato, A., Ardito, R., Faraglia, B., Boninsegna, A., Wolf, F. I., & Cittadini, A. (2001). Resveratrol, a natural phenolic compound, inhibits cell proliferation and prevents oxidative DNA damage. Mutation Research/Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis, 496(1–2), 171–180. https://doi.org/10.1016/S1383-5718(01)00232-7 DOI: https://doi.org/10.1016/S1383-5718(01)00232-7
Silva-Carvalho, R., Baltazar, F., & Almeida-Aguiar, C. (2015). Propolis: A Complex Natural Product with a Plethora of Biological Activities That Can Be Explored for Drug Development. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine, 2015, 1–29. https://doi.org/10.1155/2015/206439 DOI: https://doi.org/10.1155/2015/206439
Silva, J.C., Rodrigues, S., Feás, X., & Estevinho, L.M. (2012). Antimicrobial activity, phenolic profile and role in the inflammation of propolis. Food and Chemical Toxicology, 50(5), 1790–1795. https://doi.org/10.1016/j.fct.2012.02.097 DOI: https://doi.org/10.1016/j.fct.2012.02.097
Tran, N. Q., Joung, Y. K., Lih, E., & Park, K. D. (2011). In Situ Forming and Rutin-Releasing Chitosan Hydrogels As Injectable Dressings for Dermal Wound Healing. Biomacromolecules, 12(8), 2872–2880. https://doi.org/10.1021/bm200326g DOI: https://doi.org/10.1021/bm200326g
Trusheva, B., Trunkova, D., & Bankova, V. (2007). Different extraction methods of biologically active components from propolis: a preliminary study. Chemistry Central Journal, 1(1), 13. https://doi.org/10.1186/1752-153X-1-13 DOI: https://doi.org/10.1186/1752-153X-1-13
Vellosa, J.C.R., Regasini, L. O., Khalil, N. M., Bolzani, V. S., Khalil, O. A. K. & Manente, F. A., et al. (2011). Antioxidant and cytotoxic studies for kaempferol, quercetin and isoquercitrin. Eclética Química, 36(2), 7–20. https://doi.org/10.1590/S0100-46702011000200001 DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-46702011000200001
Wagh, V.D. (2013). Propolis: A Wonder Bees Product and Its Pharmacological Potentials. Advances in Pharmacological Sciences, 2013, 1–11. https://doi.org/10.1155/2013/308249 DOI: https://doi.org/10.1155/2013/308249
Xiao, X., Shi, D., Liu, L., Wang, J., Xie, X., Kang, T., & Deng, W. (2011). Quercetin suppresses cyclooxygenase-2 expression and angiogenesis through inactivation of P300 signaling. PLoS ONE, 6(8), e22934. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0022934. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0022934
Yang, L., Yan, Q., Ma, J., Wang, Q., Zhang, J., & Xi, G. (2013). High-performance liquid chromatographic determination of phenolic compounds in propolis. Tropical Journal of Pharmaceutical Research, 12(5). https://doi.org/10.4314/tjpr.v12i5.17 DOI: https://doi.org/10.4314/tjpr.v12i5.17
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