MICROPROPAGAÇÃO DE <i>Aspidosperma polyneuron</i>. Müll. Arg. A PARTIR DE PLÂNTULAS GERMINADAS IN VITRO

Autores

  • Luciana Lopes Fortes Ribas Universidade Federal de Santa Maria, Santa Maria, RS
  • Miguel Pedro Guerra
  • Luiz Kulchetscki
  • Flávio Zanette

DOI:

https://doi.org/10.5902/1980509827688

Palavras-chave:

forestry species, juvenile explant, multiplication, rooting

Resumo

Foi desenvolvido um método eficiente de regeneração de plantas para Aspidosperma polyneuron a partir de culturas nodais de plântulas. Sementes maduras foram desinfestadas e os embriões germinaram em meio de cultura Woody Plant Medium (WPM).  Segmentos nodais do epicótilo e hipocótilo retirados de plântulas de três semanas crescendo in vitro foram cultivados em meio WPM, suplementado com 6-benziladenina (BA) (2,5; 5,0 e 10 mM), isolado ou combinado com ácido indol-3-butírico (AIB) ou ácido a-naftalenoacético (ANA) (0,5 mM) durante o cultivo inicial e três subcultivos. Para indução de raízes, inicialmente, foram testados tratamentos-pulso de AIB (2,5; 5,0 ou 10 mM) por 15 minutos, seguidos de transferência para meio WPM, sem regulador de crescimento por cinco semanas. Plantas regeneradas foram transplantadas para bandejas contendo solo e substrato Plantmax® (3:1) e depois transferidas para sacos plásticos para aclimatização em casa de vegetação. Os explantes do hipocótilo apresentaram resultados superiores de regeneração de brotações e enraizamento, quando comparados com os do epicótilo. Os maiores números de brotações por explante (7-8) foram obtidos em meios de cultura, suplementados com 10 mM de BA, no terceiro subcultivo. A adição de 0,5 mM de AIB ou ANA combinada com BA não influenciou a regeneração de brotações. O tratamento-pulso de AIB (5-10 mM) por 15 minutos induziu 60% de enraizamento. As plantas regeneradas foram aclimatizadas e bem estabelecidas em casa de vegetação com 90% de sobrevivência, após três meses. Baseado nos resultados desse estudo, a micropropagação de Aspidosperma  polyneuron a partir de plântulas cultivadas in vitro é viável e pode ser uma boa opção para conservação e propagação dessa espécie importante que está em extinção.

Downloads

Não há dados estatísticos.

Referências

ARAGÃO, A. K. O.; ALOUFA, M. A. I.; COSTA, I. A. O efeito do BAP (6-benzilaminopurina) sobre indução de brotos em explantes de pau-brasil. Cerne, Lavras, v. 17, n. 3, p. 339-345, 2011.

AUER, C. A. et al. Comparison of benzyl adenine metabolism in two Petunia hybrida lines differing in shoot organogenesis. Plant Physiology, Washington, v. 5, n. 3, p. 1035-1041, 1992.

BOUZA, L. et al. The differential effect of N6-benzyl-adenine and N6-(2-isopentenyl)-adenine on in vitro propagation of Paeonia suffruticosa Andr. is correlated with different hormone contents. Plant Cell Reports, New York, v. 12, n. 10, p. 593-596, 1993.

BRUNE, A.; MELCHIOR, G. H. Ecological and genetical factors affecting exploitation and conservation of forests in Brazil and Venezuela. In: BURLEY, J.; STYLES, B. T. Tropical trees: variation, breeding and conservation. New York: Academic, 1976. p. 203-215.

CAMPOS, V. C. A. et al. Micropropagação de umburana de cheiro. Ciência Rural, Santa Maria, v. 43, n. 4, p. 639-644, 2013.

CARVALHO, P. E. R. Espécies florestais brasileiras: recomendações silviculturais, potencialidades e uso da madeira. Colombo: Embrapa-CNPF, 1994.

DECLERCK, V.; KORBAN, S. S. Effects of source macronutrients and plant growth regulator concentrations on shoot proliferation of Cornus florida. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, New York, v. 38, n. 1, p. 57-60, 1994.

FERMINO JÚNIOR, P. C. P.; RAPOSO, A.; SCHERWINSKI-PEREIRA, J. E. Enraizamento ex vitro e aclimatização de plantas micropropagadas de Tectona grandis. Floresta, Curitiba, v. 41, n. 1, p. 79-86, 2011.

FEYISSA, T.; WELANDER, M.; NEGASH, L. Micropropagation of Hagenia abyssinica: a multipurpose tree. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, New York, v. 80, p. 119-127, 2005.

GROSSNICKLES, S. C.; CYR, D.; POLONENKO, D. R. Somatic embryogenesis tissue culture for the propagation of conifer seedlings: a technology comes of age. Tree Planters’ Notes, Oregon, v. 47, n. 2, p. 48-57, 1996.

HARTMANN, H. T. et al. Plant propagation principles and practices, 7. ed. New Jersey: Prentice-Hall, 2002.

HATSCHBACH, G. G.; ZILLER, S. R. Lista vermelha de plantas ameaçadas de extinção no Estado de Paraná. Curitiba: SEMA, 1995.

LETHAM, D. S.; PALMI, L. M. S. The biosynthesis and metabolism of cytokinins. Annual Review of Plant Physiology, California, v. 34, p. 163-197, 1983.

LLOYD, G.; MCCOWN, B. Commercially feasible micropropagationof mountain laurel, Kalmia latifolia by use of shoot-tip culture. Combined Proceedings International Plant Propagators' Society, New York, v. 30, p. 421-427, 1980.

MONGOMAKÉ, K. et al. In vitro plantlets regeneration in Bambara groundnut Vigna subterranean (L.) Verdc. (Fabaceae) through direct shoot bud differentiation on hypocotyls and epicotyls cuttings. African Journal of Biotechnology, Quênia, v. 8, n. 8, p. 1466-1473, 2009.

NUNES, E. C. et al. In vitro culture of Cedrela fissilis Vellozo (Meliaceae). Plant Cell, Tissue and Organ Culture, New York, v. 70, n. 3, p. 259-268, 2002.

OLIVEIRA, L. F. et al. Propagation from axillary buds and anatomical study of adventitious roots of Pinus taeda L. African Journal of Biotechnology, Quênia, v. 12, n. 35, p. 5413-5422, 2013.

PATTNAIK, S. K.; SAHOO, Y.; CHAND, P. K. Micropropagation of a fruit tree, Morus australis Poir. syn. M. acidosa Griff. Plant Cell Reports, New York, v. 15, n. 11, p. 841-845, 1996.

PELEGRINI, L. L. et al. Micropropagation of Ocotea porosa (Nees & Martius) Barroso. African Journal of Biotechnology, Quênia, v. 10, n. 9, p. 1527-1533, 2011.

PEREZ, C.; POSTIGO, P. Micropropagation of Betula celtiberica. Annals of Botany, Oxford, v. 64, n.1, p. 67-69, 1989.

PEREZ-PARRON, M. A.; GONZALEZ-BENITO, M. E.; PEREZ, C. Micropropagation of Fraxinus angustifolia from mature and juvenile plant material. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, New York, v. 37, n. 3, p. 297-302, 1994.

PUROHIT, S. D.; DAVE, A. Micropropagation of Sterculia urens Roxb.- an endangered tree species. Plant Cell Reports, New York, v. 15, n. 9, p. 704-706, 1996.

RAJESWARI, V.; PALIWAL, K. In vitro adventitious shoot organogenesis and plant regeneration from seedling explants of Albizia odoratissima L. f. (Benth.). In Vitro Cellular & Developmental Biology, New York, v. 44, n. 2, p. 78-83, 2008.

RIBAS, L. L. F. et al. Estabelecimento de culturas assépticas de Aspidosperma polyneuron. Ciência Florestal, Santa Maria, v. 12, n. 1, p. 115-122, 2003.

RIBAS, L. L. F. Micropropagação de Aspidosperma polyneuron (peroba-rosa) a partir de segmentos nodais de mudas juvenis. Revista Árvore, Viçosa, MG, v. 29, n. 4, p. 517-524, 2005.

SANCHEZ, M. C. et al. Improving micropropagation conditions for adult-phase shoots of chestnut. Journal of Horticultural Sciences, Bangalore, v. 72, n. 3, p. 4 33-443, 1997.

SOUZA, L. A.; MOSCHETTA, I. S. Morfo-anatomia do fruto e da plântula de Aspidosperma polyneuron M. Arg. (Apocynaceae). Revista Brasileira de Biologia, São Carlos, v. 52, n. 3, p. 439-447, 1992.

TANG, D.; ISHII, K.; OHBA, K. In vitro regeneration of Alnus cremastogyne Burk from epicotyl explants. Plant Cell Reports, New York, v. 15, n. 9, p. 558-661, 1996.

TAMTA, S. et al. In vitro propagation of brown oak (Quercus semecarpifolia Sm.) from seedling explants. In Vitro Cellular & Developmental Biology, New York, v. 44, n. 2, p. 136-141, 2008.

TAVARES, A. C.; PIMENTA, M. C.; GONÇALVES, M. T. Micropropagation of Melissa officinalis L. through proliferation of axillary shoots. Plant Cell Reports, New York, v. 15, n. 6, p. 441-444, 1996.

THORPE, T. A.; HARRY, I. S.; KUMAR, P. P. Application of micropropagation to forestry. In: DEBERGH, P. C.; ZIMMERMAN, R. H. Micropropagation: technology and application. [s. l.]: Kluwer Academic, 1991. p. 331-336.

TRINDADE, H. et al. The role of cytokinin in rapid multiplication of shoots of Eucalyptus globulus grown in vitro. Australian Forestry, Australia, v. 53, n. 4, p. 221-223, 1990.

WALIA, N.; SINHA, S.; BABBAR, S. B. Micropropagation of Crataeva nurvala. Biologia Plantarum, New York, v. 46, n. 2, p. 181-185, 2003.

Downloads

Publicado

29-06-2017

Como Citar

Ribas, L. L. F., Guerra, M. P., Kulchetscki, L., & Zanette, F. (2017). MICROPROPAGAÇÃO DE <i>Aspidosperma polyneuron</i>. Müll. Arg. A PARTIR DE PLÂNTULAS GERMINADAS IN VITRO. Ciência Florestal, 27(2), 391–402. https://doi.org/10.5902/1980509827688

Edição

Seção

Artigos

Artigos mais lidos pelo mesmo(s) autor(es)

Artigos Semelhantes

Você também pode iniciar uma pesquisa avançada por similaridade para este artigo.