Growth of <i>Parapiptadenia rigida</i> inoculated with rhizobia and arbuscular mycorrhizal fungi in the nursery and field
DOI:
https://doi.org/10.5902/1980509884193Keywords:
Inoculation, Symbiosis, Recovery of degraded areas, Fabaceae, GlomeromycotaAbstract
Parapiptadenia rigida is a N-fixing arboreal legume native to the Atlantic Forest of southern Brazil. It is commonly used in urban afforestation, restoring riparian forests and agroforestry systems (AFSs). In this study, an experiment was conducted with nine treatments with the objective of evaluating the growth of Parapiptadenia rigida seedlings inoculated with rhizobia and arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) under nursery conditions and in the field, with the seedlings being inoculated with: (a) BR 9004 strain (Paraburkholderia sp); (b) BR 3804 strain (Mesorhizobium plurifarium); (c) BR 827 strain (Ensifer fredii); (d) BR 9004 strain+AMF; (e) BR 3804 strain+AMF; (f) BR 827 strain+AMF; (g) Mycorrhizal control (AMF inoculation only); (h) Nitrogen control (with nitrogen fertilization only); (i) Absolute control (without inoculation and without fertilization). The seedlings were evaluated for height and root collar circumference (SC) after 120 days in the nursery, and then for root, shoot and nodule dry mass, mycorrhizal colonization, counting and identification of spores in the substrate after 150 days in the nursery. The seedlings were transplanted into the field at 330 days and monitored in relation to height growth, SC and survival up to 420 days after planting. The BR3804+AMF and BR9004+AMF treatments stood out in growth and survival, respectively, and were related to the occurrence of Glomus sinuosum and Acaulospora scrobiculata spores in the rhizosphere of seedlings.
Downloads
References
ANDREWS, M.; ANDREWS, M. E. Specificity in Legume-Rhizobia Symbiosis. International Journal of Molecular Sciences, Basel, v. 18, n. 705, 2017. DOI: 10.3390/ijms18040705.
AZCÓN AGUILAR, C.; BARCELO, A.; VIDAL, M. T.; VINA, G. Further studies on the influence of mycorrhiza on growth and development of micropropagated avocado plants. Agrono-mie, Paris, v. 46, n. 12, p. 837-840, 1992. https://hal.science/hal-00885438
BERBARA, R. L.; SOUZA F. A.; FONSECA, H. M. A. C.; FERNANDES, M. S. Fungos micorrízi-cos arbusculares: muito além da nutrição. In: Nutrição Mineral de Plantas. Sociedade Brasileira de Ciência do Solo, p. 72, 2006.
BOURNAUD, C.; JAMES, E. K.; FARIA, S. M. de; LEBRUN, M.; MELKONIAN, R.; DUPONNOIS, R., ...; PRIN, Y. Interdependency of efficient nodulation and arbuscular mycorrhization in Piptadenia gonoacantha, a Brazilian legume tree. Plant, cell & environment, v. 41, n. 9, p. 2008-2020, 2018. DOI: https://doi.org/10.1111/pce.13095
CARVALHO, P. E. R. Angico-Gurucaia. 1. ed. Colombo: Embrapa Florestas. 2002. 14p. (Circular Técnica, 58).
CARVALHO, P. E. R. Espécies arbóreas brasileiras. 1. ed. Brasília: Embrapa Informação Tecnológica, 2003. v. 1, 1039 p.
CASTILLO-GUEVARA, C.; LARA, C.; PÉREZ, G. Micofagia por roedores en un bosque tem-plado del centro de México. Revista Mexicana de Biodiversidad, Cidade do México, n. 83, p. 772-777, 2012. DOI: https://doi.org/10.7550/rmb.27445
DE LA CRUZ, R. E.; MANALO, M. Q.; AGGANGAN, N. S.; TAMBALO, J. D. Growth of trees inoculated with VA mycorrhizal fungi and Rhizobium. Plant and Soil, The Hague, v. 108, p. 111-115, 1988. https://link.springer.com/article/10.1007/BF02370105
DIAS, P. C.; PEREIRA, M. D. S. F.; KASUYA, M. C. M.; PAIVA, H. N. D.; OLIVEIRA, L. S. D.; XA-VIER A. Micorriza arbuscular e rizóbios no enraizamento e nutrição de mudas de angico-vermelho. Revista Árvore, Viçosa, n. 36, p. 1027-1038, 2012. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-67622012000600004
FERREIRA, D. F. Sisvar: Um sistema computacional de estatística. Ciência e Agrotecnolo-gia, Lavras, v. 35, p. 1039-1042, 2011.
FRANCO, A. A.; DIAS, L. E.; FARIA, S. M. de; CAMPELLO, E. F. C.; SILVA, E. M. R. Uso de le-guminosas florestais noduladas e micorrizadas como agentes de recuperação e manuten-ção de vida no solo: um modelo tecnológico. In: ESTEVES, F. A. De. Estrutura, funciona-mento e manejo de ecossistemas brasileiros. S1p., 1995. P 459-467.
FARIA, M. P.; SIQUEIRA, J. O.; VALE, F. R. do; CURI, N. Crescimento de leguminosas arbó-reas em resposta a fósforo, nitrogênio, fungo micorrízico e rizóbio. I. Albizia lebbeck (L.) Benth. Revista Árvore, Viçosa, v. 19, n. 3, p. 293-307, 1995a.
FARIA, M. P.; VALE, F. R. do; SIQUEIRA, J. O.; CURI, N. Crescimento de leguminosas arbó-reas em resposta a fósforo, nitrogênio, fungo micorrízico e rizóbio. II. Peltophorum dubium (Spreng.) Taub. Revista Árvore, Viçosa, v. 19, n.4, p. 433-446, 1995b.
FREIRE, L. R.; BALIEIRO, F. de C.; ZONTA, E.; dos ANJOS, L. H. C.; PEREIRA, M. G.; LIMA, E.; GUERRA, J. G. M.; FERREIRA, M. B. C.; LEAL, M. A. de A.; CAMPOS, D. V. B.; POLIDORO, J. C. (Eds Tec.) Manual de Calagem e Adubação do Estado do Rio de Janeiro. EM-BRAPA/Editora Universidade Rural. 2013. 430p.
GASPARIN, E.; ARAUJO, M. M.; ZAVISTANOVICZ, T. C.; AIMI, S. C.; LÉON, E. B.; BERGHETTI, Á. L. P. Supervivencia y crecimiento inicial de Parapiptadenia rigida en campo. Floresta, Viçosa, v. 47, n. 4, p. 533-541, 2017. DOI: http://dx.doi.org/10.5380/rf.v47i4.54234
GERDEMANN, J. W.; NICOLSON, T. H. Spores of mycorrhizal Endogene species extracted from soil by wet sieving and decanting. Transactions of British Mycological Society, Cambridge, v. 46, n. 2, p. 235-244, 1963. DOI: https://doi.org/10.1016/S0007-1536(63)80079-0
GIOVANNETTI, M.; MOSSE, B. An evaluation of techniques for measuring Vesicular Arbus-cular Mycorrhizal infection in roots. New Phytologist, Oxford, v. 84, p. 489-500, 1980. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.1980.tb04556.x
GRACE, C.; STRIBLEY, D. P. A safer procedure for routine staining of vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi. Mycological Research, Amsterdam, v. 95, n. 10, p. 1160-1162, 1991. DOI: https://doi.org/10.1016/S0953-7562(09)80005-1
GROSS, E.; CORDEIRO, L.; CAETANO, F. H. Nodulação e micorrização em Anadenanthera peregrina var. falcata em solo de cerrado autoclavado e não autoclavado. Revista Brasi-leira de Ciência do Solo, Viçosa, v. 28, p. 95-101, 2004. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-06832004000100010
GRUZMÁN I.; DÖBEREINER J. Effect of Azotobacter chroococcum and tryptophan on the in-oculation of soybean (Glycine max (L.) Merr.) with Rhizobium japonicum. In: Reunião latino americana sobre inoculantes para legum, 4, Anais; 1968. Porto Alegre: Secretaria de Agri-cultura; 1968. p. 46-57.
HAAS, J. H.; MENGE, J. A. VA-mycorrhizal fungi and soil characteristics in avocado (Persea americana Mill.) orchard soil. Plant and Soil, The Hague, v. 127, n. 2, p. 207-212, 1990. https://www.jstor.org/stable/42938645
JENKINS W. R. A rapid centrifugal-flotation technique for separating nematodes from soil. Plant Disease Report, Beltsville, v.48, p.692, 1964. DOI: https://doi.org/10.1007/s10333
JESUS, E. C.; SCHIAVO, J. A.; FARIA, S. M. de. Dependência de micorrizas para a nodulação de leguminosas arbóreas tropicais. Revista Árvore, Viçosa, v. 29, n. 4, p. 545-552, 2005. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-67622005000400006
KOSKE, R. E.; GEMMA, J. N. A Modified Procedure for Staining Roots to Detect VA Mycor-rhizas. Mycological Research, Amsterdam, v. 92, p. 486-488, 1989. DOI: https://doi.org/10.1016/S0953-7562(89)80195-9
KOIDE, R. T. Nutrient supply, nutrient demand and plant response to mycorrhizal infection. New Phytologist, Oxford, v. 117, n. 3, p. 365-386, 1991. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.1991.tb00001.x
LORENZI, H. Árvores brasileiras: manual de identificação e cultivo de plantas arbó-reas nativas do Brasil. Nova Odessa: Plantarum, 1992. 352p.
MAINIERI, C. Madeiras do Parque Estadual Morro do Diabo. Silvicultura em São Paulo, São Paulo, v.7, p.147- 150, 1970.
MARQUES, M. S.; PAGANO, M.; SCOTTI, M. R. M. M. L. Dual inoculation of a woody leg-ume (Centrolobium tomentosum) with rhizobia and mycorrhizal fungi in south-eastern Bra-zil. Agroforestry Systems, Berlim, v. 52, p. 107–117, 2001. DOI: https://doi.org/10.1023/A:1010637401475
MELLO, R. B.; FARIA, S. M. de. Compatibilidade de bactérias fixadoras de nitrogênio, rizó-bio, com espécies da família Leguminosae. Embrapa Agrobiologia-Comunicado Técni-co (INFOTECA-E), Seropédica, RJ, 1998.
MORIM, M. P. 2020. Parapiptadenia in Flora do Brasil 2020. Jardim Botânico do Rio de Janeiro. Available at: http://floradobrasil.jbrj.gov.br/reflora/floradobrasil/FB31381. Ac-cessed in: 07 Feb. 2022
PAN, B.; SMITH, D. L. Genistein preincubation of Bradyrhizobium japonicum cells improves strain competitiveness under greenhouse, but not field conditions. Plant and soil, The Hague, v. 223, n. 1-2, p. 231-236, 2000. DOI: https://doi.org/10.1023/A:1004880305826
PELEJA V. L.; REGO A. K. C.; DA SILVA JÚNIOR M. L.; FURTADO A. C. S.; FELSEMBURGH C. A.; TRIBUZY E. S. Interferência do alumínio no crescimento radicular, absorção e acúmulo de fósforo em plantas de paricá. Revista Ibero-Americana de Ciências Ambientais, Aquidabã, v.11, n. 1, p. 1-8, 2020. DOI: https://doi.org/10.6008/cbpc2179-6858.2020.001.0001
PATREZE, C. M.; CORDEIRO L. Nitrogen-fixing and vesicular–arbuscular mycorrhizal sym-bioses in some tropical legume trees of tribe Mimoseae. Forest Ecology and Manage-ment, Netherland, v.196, p. 275–285, 2004. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foreco.2004.03.034
POUYÚ-ROJAS, E.; SIQUEIRA, J. O.; SANTOS, J. G. D. Compatibilidade simbiótica de fungos micorrízicos arbusculares com espécies arbóreas tropicais. Revista Brasileira de Ciên-cia do Solo, Viçosa, v. 30, p. 413-424, 2006. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-06832006000300003
R CORE TEAM (2018). R: A language and environment for statistical computing. Ver-sion 3.5. 2. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria.
RAO, I. M.; MILES, J. W.; BEEBE, S. E.; HORST, W. J. Root adaptations to soils with low fertili-ty and aluminium toxicity. Annals of Botany, Oxford, v. 118, n. 4, p. 593-605, 2016. DOI: https://doi.org /10.1093/aob/mcw073
SCHUMACHER, M. V.; CECONI, D. E.; ARRUDA, C. S. Influência de diferentes doses de fós-foro no crescimento de mudas de angico-vermelho (Parapiptadenia rigida (Bentham) Bre-nan). Revista Árvore, Viçosa, v. 28, n. 1, p. 149-155, 2004. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-67622004000100019
SCHENCK, N. C.; PÉREZ, Y. Manual for the identification of VA mycorrhizal fungi. IFAS, University of Florida, Gainesville. p. 241, 1988.
SMITH, S. E.; READ, D. J. Mycorrhizal symbiosis. London: Academic Press, 1997, 605p.
SMITH, S.; SMITH, F.; JAKOBSEN, I. Mycorrhizal fungi can dominate phosphate supply to plants irrespective of growth responses. Plant physiology, Oxford, v. 133, p. 16-20, 2003. DOI: https://doi.org/10.1104/pp.103.024380
SOUTO, J. J. P. Deserto, uma ameaça? Estudos dos núcleos de desertificação na fronteira sudoeste do Rio Grande do Sul. Porto Alegre: Secretaria da Agricultura - De-partamento de Recursos Naturais Renováveis, 1984. 169 p.
SOUZA, J. R.; MAGALHAES, R. S.; RIBEIRO, B. N.; MINGOTTE, F. L. C.; CASTRO, G. S. A; GUERRA, J. G. M.; ESPINDOLA, J. A. A. Desempenho agronômico da batata-doce em su-cessão a milho e crotalaria inoculados com fungos micorrízicos. Science and Technology Innovation in Agronomy, Bebedouro, v. 3, p. 106-114, 2019. http://www.alice.cnptia.embrapa.br/alice/handle/doc/1120181
STEFFEN, G. P. K.; STEFFEN, R. B.; MORAIS, R. M. D.; SALDANHA, C. W.; MALDANER, J.; LOIOLA, T. M. Parapiptadenia rigida mycorrhization with spores of Scleroderma citrinum. Cerne, Lavras, v. 23, n. 2, p. 241-248, 2017. DOI: https://doi.org/10.1590/01047760201723022342
STOFFEL, S. C. G.; ARMAS, R. D. D.; GIACHINI, A. J.; ROSSI, M. J.; GONZALEZ, D.; MEYER, E.; SOARES, C. R. F. S. Micorrizas arbusculares no crescimento de leguminosas arbóreas em substrato contendo rejeito de mineração de carvão. Cerne, Lavras, v. 22, n. 2, p. 181-188, 2016. DOI: https://doi.org/10.1590/01047760201622021969
SYLVIA, D. M.; WILLIAMS, S. E. Vesicular-arbuscular mycorrhizae and environmental stress. In: BETHLENFALVAY, G. J.; LINDERMAN, R. G. (Eds.). Mycorrhizae in sustainable agricul-ture. Madison: ASA Special Publication, p.101-124, 1992.
TER BRAAK, C. J.; SMILAUER, P. CANOCO reference manual and Cano Draw for Win-dows user's guide: software for canonical community ordination (version 4.5). Available at: https://www.canoco.com. Accessed in: 20 June 2002.
Downloads
Published
How to Cite
Issue
Section
License
Copyright (c) 2024 Ciência Florestal
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
A revista CIÊNCIA FLORESTAL reserva-se o direito de realizar, nos originais, alterações de ordens normativas, ortográficas e gramaticais, com vistas a manter o padrão escolar da língua, mas respeitando o estilo dos autores. As provas finais podem ou não ser enviadas aos autores.
