Crescimento de <i>Parapiptadenia rigida</i> inoculada com rizóbios e fungos micorrízicos arbusculares no viveiro e no campo

Autores

DOI:

https://doi.org/10.5902/1980509884193

Palavras-chave:

Inoculação, Simbiose, Recuperação de áreas degradadas, Fabaceae, Glomeromycota

Resumo

Parapiptadenia rigida é uma leguminosa arbórea fixadora de N, nativa da Mata Atlântica do Sul do Brasil, comumente usada na arborização urbana, restauração de matas ciliares e SAFs. Com objetivo de avaliar o crescimento de mudas de Parapiptadenia rigida inoculadas com rizóbios e fungos micorrízicos arbusculares (FMAs) em condições de viveiro e no campo, foi realizado um experimento com nove tratamentos, sendo as mudas inoculadas com: (a) estirpe BR 9004 (Paraburkholderia sp); (b) estirpe BR 3804 (Mesorhizobium plurifarium); (c) estirpe BR 827 (Ensifer fredii); (d) estirpe BR 9004+FMAs; (e) estirpe BR 3804+FMAs; (f) estirpe BR 827+FMAs; (g) Testemunha micorrizada (apenas inoculação de FMAs); (h) Testemunha nitrogenada (apenas com fertilização de nitrogênio); (i) Testemunha absoluta (sem inoculação e sem fertilização). Após 120 dias no viveiro as mudas foram avaliadas quanto à altura e circunferência do colo (CAC), e após 150 dias quanto à massa seca de raízes, da parte aérea e de nódulos, colonização micorrízica, contagem e identificação de esporos no substrato. Com 330 dias as mudas foram transplantadas no campo e monitoradas em relação ao crescimento em altura, CAC e sobrevivência até 420 dias após o plantio. Os tratamentos BR3804+FMAs e BR9004+FMAs se destacaram em crescimento e sobrevivência, respectivamente, e se relacionaram à ocorrência de esporos de Glomus sinuosum e Acaulospora scrobiculata na rizosfera das mudas.

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Biografia do Autor

Karine de Oliveira Andrade, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro

Graduação em Engenharia Agronômica na UFRRJ. 

Milena Alves da Silva, Instituto Estadual do Ambiente (INEA/RJ)

Engenharia Florestal formada na UFRRJ, lotada no Instituto Estadual do Ambiente (INEA)

Zuleica Maria Moreira, Instituto Estadual do Ambiente (INEA/RJ)

Bióloga, lotada no INEA-RJ

Janaína Ribeiro Costa Rouws, Empresa Brasileira de Pesquisa em Agropecuária (Embrapa Agrobiologia)

Agrônoma lotada na Embrapa Agrobiologia.

Orivaldo José Saggin Júnior, Empresa Brasileira de Pesquisa em Agropecuária (Embrapa Agrobiologia)

Agrônomo lotada na Embrapa Agrobiologia

Juliana Müller Freire, Empresa Brasileira de Pesquisa em Agropecuária (Embrapa Agrobiologia)

Bióloga, Médica, Pesquisadora

Referências

ANDREWS, M.; ANDREWS, M. E. Specificity in Legume-Rhizobia Symbiosis. International Journal of Molecular Sciences, Basel, v. 18, n. 705, 2017. DOI: 10.3390/ijms18040705.

AZCÓN AGUILAR, C.; BARCELO, A.; VIDAL, M. T.; VINA, G. Further studies on the influence of mycorrhiza on growth and development of micropropagated avocado plants. Agrono-mie, Paris, v. 46, n. 12, p. 837-840, 1992. https://hal.science/hal-00885438

BERBARA, R. L.; SOUZA F. A.; FONSECA, H. M. A. C.; FERNANDES, M. S. Fungos micorrízi-cos arbusculares: muito além da nutrição. In: Nutrição Mineral de Plantas. Sociedade Brasileira de Ciência do Solo, p. 72, 2006.

BOURNAUD, C.; JAMES, E. K.; FARIA, S. M. de; LEBRUN, M.; MELKONIAN, R.; DUPONNOIS, R., ...; PRIN, Y. Interdependency of efficient nodulation and arbuscular mycorrhization in Piptadenia gonoacantha, a Brazilian legume tree. Plant, cell & environment, v. 41, n. 9, p. 2008-2020, 2018. DOI: https://doi.org/10.1111/pce.13095

CARVALHO, P. E. R. Angico-Gurucaia. 1. ed. Colombo: Embrapa Florestas. 2002. 14p. (Circular Técnica, 58).

CARVALHO, P. E. R. Espécies arbóreas brasileiras. 1. ed. Brasília: Embrapa Informação Tecnológica, 2003. v. 1, 1039 p.

CASTILLO-GUEVARA, C.; LARA, C.; PÉREZ, G. Micofagia por roedores en un bosque tem-plado del centro de México. Revista Mexicana de Biodiversidad, Cidade do México, n. 83, p. 772-777, 2012. DOI: https://doi.org/10.7550/rmb.27445

DE LA CRUZ, R. E.; MANALO, M. Q.; AGGANGAN, N. S.; TAMBALO, J. D. Growth of trees inoculated with VA mycorrhizal fungi and Rhizobium. Plant and Soil, The Hague, v. 108, p. 111-115, 1988. https://link.springer.com/article/10.1007/BF02370105

DIAS, P. C.; PEREIRA, M. D. S. F.; KASUYA, M. C. M.; PAIVA, H. N. D.; OLIVEIRA, L. S. D.; XA-VIER A. Micorriza arbuscular e rizóbios no enraizamento e nutrição de mudas de angico-vermelho. Revista Árvore, Viçosa, n. 36, p. 1027-1038, 2012. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-67622012000600004

FERREIRA, D. F. Sisvar: Um sistema computacional de estatística. Ciência e Agrotecnolo-gia, Lavras, v. 35, p. 1039-1042, 2011.

FRANCO, A. A.; DIAS, L. E.; FARIA, S. M. de; CAMPELLO, E. F. C.; SILVA, E. M. R. Uso de le-guminosas florestais noduladas e micorrizadas como agentes de recuperação e manuten-ção de vida no solo: um modelo tecnológico. In: ESTEVES, F. A. De. Estrutura, funciona-mento e manejo de ecossistemas brasileiros. S1p., 1995. P 459-467.

FARIA, M. P.; SIQUEIRA, J. O.; VALE, F. R. do; CURI, N. Crescimento de leguminosas arbó-reas em resposta a fósforo, nitrogênio, fungo micorrízico e rizóbio. I. Albizia lebbeck (L.) Benth. Revista Árvore, Viçosa, v. 19, n. 3, p. 293-307, 1995a.

FARIA, M. P.; VALE, F. R. do; SIQUEIRA, J. O.; CURI, N. Crescimento de leguminosas arbó-reas em resposta a fósforo, nitrogênio, fungo micorrízico e rizóbio. II. Peltophorum dubium (Spreng.) Taub. Revista Árvore, Viçosa, v. 19, n.4, p. 433-446, 1995b.

FREIRE, L. R.; BALIEIRO, F. de C.; ZONTA, E.; dos ANJOS, L. H. C.; PEREIRA, M. G.; LIMA, E.; GUERRA, J. G. M.; FERREIRA, M. B. C.; LEAL, M. A. de A.; CAMPOS, D. V. B.; POLIDORO, J. C. (Eds Tec.) Manual de Calagem e Adubação do Estado do Rio de Janeiro. EM-BRAPA/Editora Universidade Rural. 2013. 430p.

GASPARIN, E.; ARAUJO, M. M.; ZAVISTANOVICZ, T. C.; AIMI, S. C.; LÉON, E. B.; BERGHETTI, Á. L. P. Supervivencia y crecimiento inicial de Parapiptadenia rigida en campo. Floresta, Viçosa, v. 47, n. 4, p. 533-541, 2017. DOI: http://dx.doi.org/10.5380/rf.v47i4.54234

GERDEMANN, J. W.; NICOLSON, T. H. Spores of mycorrhizal Endogene species extracted from soil by wet sieving and decanting. Transactions of British Mycological Society, Cambridge, v. 46, n. 2, p. 235-244, 1963. DOI: https://doi.org/10.1016/S0007-1536(63)80079-0

GIOVANNETTI, M.; MOSSE, B. An evaluation of techniques for measuring Vesicular Arbus-cular Mycorrhizal infection in roots. New Phytologist, Oxford, v. 84, p. 489-500, 1980. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.1980.tb04556.x

GRACE, C.; STRIBLEY, D. P. A safer procedure for routine staining of vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi. Mycological Research, Amsterdam, v. 95, n. 10, p. 1160-1162, 1991. DOI: https://doi.org/10.1016/S0953-7562(09)80005-1

GROSS, E.; CORDEIRO, L.; CAETANO, F. H. Nodulação e micorrização em Anadenanthera peregrina var. falcata em solo de cerrado autoclavado e não autoclavado. Revista Brasi-leira de Ciência do Solo, Viçosa, v. 28, p. 95-101, 2004. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-06832004000100010

GRUZMÁN I.; DÖBEREINER J. Effect of Azotobacter chroococcum and tryptophan on the in-oculation of soybean (Glycine max (L.) Merr.) with Rhizobium japonicum. In: Reunião latino americana sobre inoculantes para legum, 4, Anais; 1968. Porto Alegre: Secretaria de Agri-cultura; 1968. p. 46-57.

HAAS, J. H.; MENGE, J. A. VA-mycorrhizal fungi and soil characteristics in avocado (Persea americana Mill.) orchard soil. Plant and Soil, The Hague, v. 127, n. 2, p. 207-212, 1990. https://www.jstor.org/stable/42938645

JENKINS W. R. A rapid centrifugal-flotation technique for separating nematodes from soil. Plant Disease Report, Beltsville, v.48, p.692, 1964. DOI: https://doi.org/10.1007/s10333

JESUS, E. C.; SCHIAVO, J. A.; FARIA, S. M. de. Dependência de micorrizas para a nodulação de leguminosas arbóreas tropicais. Revista Árvore, Viçosa, v. 29, n. 4, p. 545-552, 2005. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-67622005000400006

KOSKE, R. E.; GEMMA, J. N. A Modified Procedure for Staining Roots to Detect VA Mycor-rhizas. Mycological Research, Amsterdam, v. 92, p. 486-488, 1989. DOI: https://doi.org/10.1016/S0953-7562(89)80195-9

KOIDE, R. T. Nutrient supply, nutrient demand and plant response to mycorrhizal infection. New Phytologist, Oxford, v. 117, n. 3, p. 365-386, 1991. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.1991.tb00001.x

LORENZI, H. Árvores brasileiras: manual de identificação e cultivo de plantas arbó-reas nativas do Brasil. Nova Odessa: Plantarum, 1992. 352p.

MAINIERI, C. Madeiras do Parque Estadual Morro do Diabo. Silvicultura em São Paulo, São Paulo, v.7, p.147- 150, 1970.

MARQUES, M. S.; PAGANO, M.; SCOTTI, M. R. M. M. L. Dual inoculation of a woody leg-ume (Centrolobium tomentosum) with rhizobia and mycorrhizal fungi in south-eastern Bra-zil. Agroforestry Systems, Berlim, v. 52, p. 107–117, 2001. DOI: https://doi.org/10.1023/A:1010637401475

MELLO, R. B.; FARIA, S. M. de. Compatibilidade de bactérias fixadoras de nitrogênio, rizó-bio, com espécies da família Leguminosae. Embrapa Agrobiologia-Comunicado Técni-co (INFOTECA-E), Seropédica, RJ, 1998.

MORIM, M. P. 2020. Parapiptadenia in Flora do Brasil 2020. Jardim Botânico do Rio de Janeiro. Available at: http://floradobrasil.jbrj.gov.br/reflora/floradobrasil/FB31381. Ac-cessed in: 07 Feb. 2022

PAN, B.; SMITH, D. L. Genistein preincubation of Bradyrhizobium japonicum cells improves strain competitiveness under greenhouse, but not field conditions. Plant and soil, The Hague, v. 223, n. 1-2, p. 231-236, 2000. DOI: https://doi.org/10.1023/A:1004880305826

PELEJA V. L.; REGO A. K. C.; DA SILVA JÚNIOR M. L.; FURTADO A. C. S.; FELSEMBURGH C. A.; TRIBUZY E. S. Interferência do alumínio no crescimento radicular, absorção e acúmulo de fósforo em plantas de paricá. Revista Ibero-Americana de Ciências Ambientais, Aquidabã, v.11, n. 1, p. 1-8, 2020. DOI: https://doi.org/10.6008/cbpc2179-6858.2020.001.0001

PATREZE, C. M.; CORDEIRO L. Nitrogen-fixing and vesicular–arbuscular mycorrhizal sym-bioses in some tropical legume trees of tribe Mimoseae. Forest Ecology and Manage-ment, Netherland, v.196, p. 275–285, 2004. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foreco.2004.03.034

POUYÚ-ROJAS, E.; SIQUEIRA, J. O.; SANTOS, J. G. D. Compatibilidade simbiótica de fungos micorrízicos arbusculares com espécies arbóreas tropicais. Revista Brasileira de Ciên-cia do Solo, Viçosa, v. 30, p. 413-424, 2006. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-06832006000300003

R CORE TEAM (2018). R: A language and environment for statistical computing. Ver-sion 3.5. 2. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria.

RAO, I. M.; MILES, J. W.; BEEBE, S. E.; HORST, W. J. Root adaptations to soils with low fertili-ty and aluminium toxicity. Annals of Botany, Oxford, v. 118, n. 4, p. 593-605, 2016. DOI: https://doi.org /10.1093/aob/mcw073

SCHUMACHER, M. V.; CECONI, D. E.; ARRUDA, C. S. Influência de diferentes doses de fós-foro no crescimento de mudas de angico-vermelho (Parapiptadenia rigida (Bentham) Bre-nan). Revista Árvore, Viçosa, v. 28, n. 1, p. 149-155, 2004. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-67622004000100019

SCHENCK, N. C.; PÉREZ, Y. Manual for the identification of VA mycorrhizal fungi. IFAS, University of Florida, Gainesville. p. 241, 1988.

SMITH, S. E.; READ, D. J. Mycorrhizal symbiosis. London: Academic Press, 1997, 605p.

SMITH, S.; SMITH, F.; JAKOBSEN, I. Mycorrhizal fungi can dominate phosphate supply to plants irrespective of growth responses. Plant physiology, Oxford, v. 133, p. 16-20, 2003. DOI: https://doi.org/10.1104/pp.103.024380

SOUTO, J. J. P. Deserto, uma ameaça? Estudos dos núcleos de desertificação na fronteira sudoeste do Rio Grande do Sul. Porto Alegre: Secretaria da Agricultura - De-partamento de Recursos Naturais Renováveis, 1984. 169 p.

SOUZA, J. R.; MAGALHAES, R. S.; RIBEIRO, B. N.; MINGOTTE, F. L. C.; CASTRO, G. S. A; GUERRA, J. G. M.; ESPINDOLA, J. A. A. Desempenho agronômico da batata-doce em su-cessão a milho e crotalaria inoculados com fungos micorrízicos. Science and Technology Innovation in Agronomy, Bebedouro, v. 3, p. 106-114, 2019. http://www.alice.cnptia.embrapa.br/alice/handle/doc/1120181

STEFFEN, G. P. K.; STEFFEN, R. B.; MORAIS, R. M. D.; SALDANHA, C. W.; MALDANER, J.; LOIOLA, T. M. Parapiptadenia rigida mycorrhization with spores of Scleroderma citrinum. Cerne, Lavras, v. 23, n. 2, p. 241-248, 2017. DOI: https://doi.org/10.1590/01047760201723022342

STOFFEL, S. C. G.; ARMAS, R. D. D.; GIACHINI, A. J.; ROSSI, M. J.; GONZALEZ, D.; MEYER, E.; SOARES, C. R. F. S. Micorrizas arbusculares no crescimento de leguminosas arbóreas em substrato contendo rejeito de mineração de carvão. Cerne, Lavras, v. 22, n. 2, p. 181-188, 2016. DOI: https://doi.org/10.1590/01047760201622021969

SYLVIA, D. M.; WILLIAMS, S. E. Vesicular-arbuscular mycorrhizae and environmental stress. In: BETHLENFALVAY, G. J.; LINDERMAN, R. G. (Eds.). Mycorrhizae in sustainable agricul-ture. Madison: ASA Special Publication, p.101-124, 1992.

TER BRAAK, C. J.; SMILAUER, P. CANOCO reference manual and Cano Draw for Win-dows user's guide: software for canonical community ordination (version 4.5). Available at: https://www.canoco.com. Accessed in: 20 June 2002.

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Publicado

21-03-2025

Como Citar

Andrade, K. de O., Silva, M. A. da, Moreira, Z. M., Rouws, J. R. C., Saggin Júnior, O. J., & Freire, J. M. (2025). Crescimento de <i>Parapiptadenia rigida</i> inoculada com rizóbios e fungos micorrízicos arbusculares no viveiro e no campo. Ciência Florestal, 35, e84193. https://doi.org/10.5902/1980509884193

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