Influência da estacionalidade no acúmulo de proteínas e carboidratos no fígado de Leptodactylus macrosternum (ANURA: Leptodactylidae)

Authors

DOI:

https://doi.org/10.5902/2179460X40098

Keywords:

Caatinga. Histoquímica. Anuros.

Abstract

Leptodactylus macrosternum é considerado bioindicador ambiental, fornecendo informações sobre possíveis perturbações e status de conservação dos ecossistemas. Mediante o exposto, objetivou-se quantificar as proteínas e carboidratos presentes nas células do fígado desta espécie de acordo com as variações estacionais. Foram coletados 32 machos adultos em área de Caatinga , no Horto Florestal Olho D’água da Bica, cidade de Cuité, estado da Paraíba, nordeste do Brasil entre os meses de janeiro a dezembro de 2013. Pequenos fragmentos de fígado dos animais foram removidos, pesados, medidos e encaminhados à rotina histológica. Os carboidratos foram corados com reação de PAS e as proteínas foram coradas com xilidina. A quantificação das proteínas e dos carboidratos depositadas nos fígados dos animais foram estatisticamente analisadas pelo teste Kruskal-Wallis e quando necessário completado pelo Teste de Dunn. Os valores referentes a as proteínas tiveram destaque para os animais coletados durante os meses de agosto (140985, 9 ± 35395, 4 pixels) e dezembro (142731.8 ± 31865.7248). Enquanto os carboidratos não apresentaram diferenças significativas durante os meses amostrados, permanecendo pouco acima de 150000 pixels. Em relação a pluviosidade e temperatura foram observadas diferenças significativas, r = 0,01/p = 0,03 e r = 0,02/p = 0,04 respectivamente, sobre a quantidades de carboidratos depositados, sugerindo que L. macrosternum atua como um importante bioindicador de variações estacionais.

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Author Biographies

José Lucas de Araújo, Universidade Federal Rural de Pernambuco

Programa de Pós-Graduação em Melhoramento Genético de Plantas

Márcio Frazão Chaves, Universidade Federal de Campina Grande

Centro de Educação e Saúde, Universidade Federal de Campina Grande

José Jailson Lima Bezerra, Universidade Federal de Pernambuco

Departamento de Botânica, Programa de Pós-Graduação em Biologia Vegetal.

Jakeline Moreira da Silva, Universidade Federal Rural de Pernambuco

Programa de Pós-Graduação em Melhoramento Genético de Plantas

Geraldo Jorge Barbosa de Moura, Universidade Federal Rural de Pernambuco

Dep. de Biologia, Lab. de Estudos Herpetológicos e Paleoherpetológicos. Programa de Pós-graduação em Ciência Animal Tropical-UFRPE. Programa de Pós-graduação em Ciência Ecologia-UFRPE. Programa de Pós-graduação em Ciências Ambientais-UFRPE. Programa de Pós-graduação em Planejamento Ambiental-UCSAL

References

AGIUS C, ROBERTS RJ. Review: Melano-macrophage centres and their role in fish pathology. Jounal of Fish Biology. 2003; 26(9): 499-509.

AMÉZQUITA A, FLECHAS SV, LIMA AP, GASSER H, HODL W. Acoustic interference and recognition space within a complex assemblage of dendrobatid frogs. Proceedings of the National Academy of Science of the United States of America. 2011; 108(1): 17058-17063.

BOQUIMPANI-FREITAS L, ROCHA CFD, VAN SLUYS M. Ecology of the horned leaf-frog, Proceratophrys appendiculata (Leptodactylidae), in na insular atlantic rainforest area of southeastern Brazil. Journal of Herpetology. 2002; 36(1): 318-322.

BERTOLUCI J, RODRIGUES MT. Seasonal patterns of breeding activity of Atlantic rainforest anurans at Boracéia, southeastern Brazil. Amphibia-Reptilia. 2003; 23(2): 161-167.

BIONDA CL, TADA I, LAJMANOVICH RC. Composition of amphibian assemblages in agroecosystems from the central region of Argentina. Russ. J. Herpetol. 2011; 18: 93-98.

BOTH C, KAEFER IL, SANTOS TG, ZECHIN STZ. An austral anuran assemblage in the Neotropics: seasonal occurrence correlated with protoperiod. Journal Natural History. 2008; 42(3): 205-222.

CHAVES MF, TENÓRIO FC, SANTOS IL, LAPA NETO CJC, TEXEIRA VW, MOURA GJ, TEXEIRA AA. Correlations of condition factor and gonadosomatic, hepatosomatic and lipo-somatic relations of Leptodactylus macrosternum (ANURA: Leptodactylidae) in the Brazilian Semi-arid. Anais da Academia Brasileira de Ciências. 2017; 89(3): 1591-1599.

CHAVES MF, MOURA GJ, TENÓRIO FDC, BAPTISTA JDS, LAPA NETO CJ, TEXEIRA VW, TEXEIRA ÁA. Influence of rainfall and temperature on the spermatogenesis of Leptodactylus macrosternum (Anura: Leptodactylidae). Zoologia. 2017; 34: 1-7.

CORSARO C, SCALIA M, LEOTTA M, MONDIO F, SICHEL G. Characterization of Kupffer cells in some Amphibia. Journal of Anatomy. 2000; 196: 249-261.

COSTA CF. Projeto horto florestal olho d’água da bica UFCG CES CUITÉ. Cuité, Fev, 2009.

DAYTON GH, FITZGERALD LA. Competition, predation, and the distribution of four desert anurans. Oecologia. 2001; 129: 430-435.

ETEROVICK PC, SAZIMA I. Anfíbios da Serra do Cipó. Ed. PUC Minas, Belo Horizonte, 2004.

FROST DR. Amphibian Species of the World: An Online Reference, Version 5.4. American Museum of Natural History, New York. 2010. Electronic Database accessible at http://research.amnh.org/vz/herpetology/amphibia/

GARTNER LP, HIATT JL. Tratado de Histologia em Cores. 2 ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 2003.

GIARETTA AA, MENIN M, FACURE KG, KOKUBUM MNC, OLIVEIRA FIHO JC. Species richness, relative abundance, and habitat of reproduction of terrestrial frogs in the Triângulo Mineiro region, Cerrado biome, southeastern Brazil. Iheringia, Série Zoologia. 2008; 98(2): 181-188.

GUIDA G, ZANNA P, GALLONE A, ARGENZIO E, CICERO R. Melanogenic Response of the Kupffer Cells of Ranna esculenta L. to Melanocyte Stimulating Hormone. Pigment Cell Research. 2004; 17: 128-134.

GUIMARÃES M. Na enxurrada seca. Revista Pesquisa FAPESP. 2010; 169: 49-51.

HATANO FH, ROCHA CFD, VAN SLUYS M. Environmental factores affeting caling activity of a tropical diurnal frog (Hylodes phyllodes: Leptodactylidae). Journal of herpetology. 2002; 36(1): 314-318.

HEYER WR, RAND AS, CRUZ CAG, PEIXOTO OL, NELSON CE. Frogsof Boracéia. Arquivos de Zoologia. 2000; 31: 231-410.

HOCKEY PAR, CURTIS OE. Use of basic biological information for rapid prediction of the response of species to habitat loss. Conservation Biology. 2009; 23(1): 64-71.

HOPWOOD D. Fixation e fixatives. In: Bancroft J.D., Stevens A. Theory and practice of histological techniques. New York, Churchill Livingstone, 3 ed., 1990: 21-42.

KREBS CJ. Ecological Methodology. Addison Wesley Educational Publishers, Menlo Park, 1999.

LI Y, COHEN JM, ROHR JR. Review and synthesis of the effects of climate change on amphibians. Integrative Zoology. 2013; 8: 145–161.

MADALOZZO B, BOTH C, CECHIN SZ. Temporal distribution and age structure of tadpoles of Hypsiboas faber and H. leptolineatus in ponds: how do they coexist? Joural of Natural History. 2013; 45(39-40): 2575-2581.

MOORE FL, BOYDB SK, KELLEYC DB. Historical perspective: Hormonal regulation of behaviors in amphibians. Hormone Behavior. 2005; 48: 373–383.

NAVAS CA, ANTONIAZZI MM, CARVALHO JE, Suzuki H, Jared C. Physiological basis for diurnal activity in dispersing juvenile Bufogranulosus in the Caatinga, a Brazilian semi-arid environment. Comparative Biochemistry and Physiology. 2007; 147: 647-657.

OLIVEIRA MCLM, SANTOS MB, LOEBMANN D, TOZETTI AM. Diversity and associations between coastal habitats and anurans in southernmost Brazil. Anais da Academia Brasileira de Ciências. 2013; 85(1): 575-582.

PRADO CPA, UETANABARO M, LOPES FS. Reproductive strategies of Leptodactyluschaquensis and Leptodactyluspodicipinus in the Pantanal, Brazil. J. Herpetol. 2000; 135-139.

RIBEIRO MG, LIMA SR. Iniciação às técnicas de preparação de material para estudo e pesquisa em morfologia. Editora Belo Horizonte: Segrac. 2000; p. 89.

RODRIGUES MT. Herpetofauna da Caatinga. In: I.R. Leal, M. Tabarelli & J.M.C. Silva (eds.). Ecologia e conservação da Caatinga. pp. 181-236. Editora Universitária, Universidade Federal de Pernambuco, Recife, Brasil, 2003.

SANTOS TG, ROSSA-FERES DC, CASATTI L. Diversidade e distribuição espaço-temporal de anuros em região com pronunciada estação seca no sudeste do Brasil. Iheringia, Série Zoologia. 2007; 97(1): 37-49.

SASSO-CERRI E, FARIA F, FREYMULLER E, MIRAGLIA SM. Testicular morphological changes during the seasonal reproductive cycle in the Bulfrog Rana catesbiana. Journal of Experimental Zoology. 2004; 301A: 249–260.

STUART SN, CHANSON JS, COX NA, YOUNG BE, RODRIGUES ASL, FISCHMAN DL, WALLER RW. Status and trends of amphibian declines and extinctions worldwide. Science. 2004; 306: 1783-1786.

SUN JWC, NARINS PM. Anthropogenic sounds differentially affect amphibian call rate. Biological Consertation. 2005; 121(1): 419-427.

TEIXEIRA LM. Informando o trade turístico paraibano: Cuité. Caderno de Turismo. 2003; p. 9-11.

TEMITOPE OO. Morphology and histology of the alimentary tract of adult palm weevil, Rhynchophorus phoenicis Fabricius (Coleoptera: Curculionidae). Journal of Developmental Biology and Tissue Engineering. 2013; 5: 13-17.

TOZETTI AM, PONTES GMF, MARTINS MB, OLIVEIRA RB. Temperature preferences of Xenodon dorbigny: field and experimenal observations. Journal of herpetology. 2010; 20(1): 277-280.

VAN SLUYS M, MARRA RV, BOQUIMPANI-FREITAS L, ROCHA CFD. Environmental factors affecting calling bahavior of sympatric frog species at na Atlantic Rain Forest Area, southeatern Brazil. Journal of herpetology. 2012; 46(1): 41-46.

VIERA WLS, ARZABE C, SANTANA GG. Composição e distribuição espaço-temporal de anuros no Cariri Paraibano, nordeste do Brasil. Oecologia Brasiliensis. 2007; 11(3): 383- 396.

VITT LJ, CALDWELL JP. Herpetology. Burlington: Elsevier. 2009.

XIMENEZ SS, TOZETTI AM. Seasonality in anuran activity and calling season in a Brasilian subtemperate wetland. Zoological Studies. 2015; 2015(1): 54-47.

XIMENEZ SS, TOZETTI AM. Seasonality in anuran activity and calling season in a Brasilian subtemperate wetland. Zoological Studies. 2015; 2015(1): 54-47.

Published

2020-06-29

How to Cite

de Araújo, J. L., Chaves, M. F., Bezerra, J. J. L., da Silva, J. M., & de Moura, G. J. B. (2020). Influência da estacionalidade no acúmulo de proteínas e carboidratos no fígado de Leptodactylus macrosternum (ANURA: Leptodactylidae). Ciência E Natura, 42, e55. https://doi.org/10.5902/2179460X40098